Un intervalle de 3 à 4 prélèvements d’ovocytes-ICSI optimise les résultats cliniques pour les femmes de plus de 40 ans

Population étudiée et approbation éthique

Nous avons analysé rétrospectivement 1 476 cycles d’ICSI provenant de femmes âgées de plus de 40 ans, au Centre de médecine de la reproduction du sixième hôpital affilié de l’Université Sun Yat-sen, entre décembre 2013 et août 2020. Considérant que l’étude couvrait une longue période, il y avait certains patients ayant subi plus d’un cycle d’ICSI. Même si certains cycles ICSI provenaient du même patient, les paramètres des cycles ICSI ne seraient pas identiques. Par exemple, l’âge, le niveau d’AMH, l’AFC, le BML, etc. du même patient ont changé avec le temps. Les cycles ICSI ont donc été considérés comme indépendants les uns des autres. Pour éviter tout biais dans l’analyse, les critères d’exclusion de cette étude étaient les suivants : (a) les patientes ayant utilisé des ovocytes congelés-décongelés ou des ovocytes de donneuses pour la fécondation ; (b) les femmes ou partenaires atteints de maladies génétiques nécessitant un test génétique préimplantatoire (PGT) ; (c) les hommes présentant une anomalie morphologique évidente des spermatozoïdes ou des spermatozoïdes provenant d’une aspiration testiculaire ou épididymaire microchirurgicale. Tous les patients ont signé un consentement éclairé écrit sur l’utilisation anonyme de leurs données. Cette étude a été approuvée par le comité d’examen institutionnel du sixième hôpital affilié de l’université Sun Yat-sen (2017ZSLYEC-016S). Toutes les méthodes ont été réalisées conformément aux directives et réglementations en vigueur.

Protocoles de stimulation ovarienne contrôlée (COS)

Nos protocoles de stimulation ovarienne contrôlée (COS) dans cette étude sont les protocoles de routine de notre centre, contenant le protocole long agoniste de la GnRH, le protocole court agoniste de la GnRH, le protocole antagoniste de la GnRH, la stimulation ovarienne en phase lutéale et le protocole de stimulation ovarienne amorcée par un progestatif (PPOS).¹³. La stimulation ovarienne a été réalisée à l’aide d’une hormone folliculo-stimulante recombinante (r-FSH) (Gonal-F, Serono, Suède) associée à un agoniste de la gonadolibérine (GnRH) (Décapeptyl ; Ferring, Kiel, Allemagne) et à un antagoniste (Cetrotide ; Merck). Serono, Darmstadt, Allemagne). Les protocoles COS et les doses quotidiennes d’injection de FSH des patientes de notre recherche ont été réalisées en fonction de l’âge des femmes, de la réserve ovarienne et de diverses réactions à la stimulation ovarienne au cours des cycles précédents. Les développements folliculaires ont été surveillés par échographie transvaginale. La gonadotrophine chorionique humaine (hCG) (Lizhu Pharmaceutical Trading Co., Chine) 4 000 à 10 000 UI ou la triptoréline (Décapeptyl, Ferring Pharmaceuticals, Allemagne) 0,1 mg et l’hCG (Lizhu Pharmaceutical Trading Co., Chine) 1 000 UI ont été administrées pour déclencher l’ovulation. lorsqu’un follicule principal atteignait un diamètre de 18 mm ou que deux follicules principaux atteignaient 17 mm. Normalement, tous les follicules accessibles de plus de 10 mm étaient aspirés guidés par échographie transvaginale lors du prélèvement des ovocytes. Ensuite, les ovocytes ont été cultivés dans un milieu de liquide tubaire humain (HTF) (milieu de fertilisation Quinn’s Advantage HTF; Quinn’s, SAGE, USA), dans 5 à 6% de CO₂ à 37 °C. Les complexes cumulus-couronne-ovocyte obtenus ont été incubés jusqu’au moment de l’ICSI.

Contrôle du temps

Les heures exactes, y compris le déclenchement de l’HCG, l’OPU et l’ICSI, ont été enregistrées par les opérateurs pour établir une banque de données. Nous avons identifié le déclencheur HCG vers l’intervalle OPU comme T1, l’intervalle OPU vers ICSI comme T2 et le déclencheur HCG vers l’intervalle ICSI comme T3. Les temps détaillés, de l’HCG à l’ICSI, ont été analysés pour évaluer l’influence des intervalles de temps sur les résultats de l’ICSI.

Mesure des résultats

Dans notre recherche, nous avons considéré le taux de grossesse clinique comme le résultat principal et le taux de fécondation comme le résultat secondaire. Le taux de fécondation a été défini comme le nombre d’embryons fécondés obtenus par ovocyte injecté multiplié par 100 pour l’ICSI.¹⁹. L’embryon D3 transférable a été défini comme comportant au moins 4 blastomères au jour 3, une taille au moins légèrement inégale du blastomère et une fragmentation <20%. Le taux d'implantation a été défini comme le nombre de sacs gestationnels divisé par le nombre d'embryons transférés. La grossesse biochimique a été définie comme un sérum β-HCG positif 15 jours après le transfert. La grossesse clinique a été définie comme un embryon visible avec un rythme cardiaque fœtal 5 semaines après le transfert.

analyses statistiques

Le test Student-t ou le test Mann – Whitney U a été utilisé pour les variables continues. Les résultats ont été exprimés en moyenne ± écart-type. Le chi carré a été utilisé pour les variables catégorielles. L’analyse de corrélation, l’analyse de régression linéaire multivariée et l’analyse de régression logistique ont été utilisées pour étudier l’effet des intervalles sur les résultats embryologiques et cliniques des cycles d’ICSI. Toutes les données ont été analysées avec SPSS 26.0 (IBM, Armonk, NY, USA). P. une valeur inférieure à 0,05 a été définie comme étant statistiquement significative. De plus, les graphiques ont été préparés avec GraphPad Prism version 5 (GraphPad Software, La Jolla, CA, USA).

Approbation éthique

Cette étude a été approuvée par le comité d’examen institutionnel du sixième hôpital affilié de l’université Sun Yat-sen (2017ZSLYEC-016S). Toutes les méthodes ont été réalisées conformément aux directives et réglementations en vigueur.

Consentement à participer

Le consentement éclairé a été obtenu de tous les participants individuels inclus dans l’étude.