Nouvelles Du Monde

“Comparaison des étapes de maturation des cellules tueuses naturelles” par Samuel Febrian Wijaya, Retno Lestari et al.

2023-07-02 07:49:26





Auteurs

Samuel Febrian Wijaya, Département de biologie, Faculté de mathématiques et de sciences naturelles, Université d’Indonésie, Depok 16424, IndonésieSuivre
Retno Lestari, Département de biologie, Faculté de mathématiques et de sciences naturelles, Université d’Indonésie, Depok 16424, IndonésieSuivre
Ina Rahmawati, Département de biologie, Faculté de mathématiques et de sciences naturelles, Université d’Indonésie, Depok 16424, IndonésieSuivre
Imelda Rosalyn Sianipar, Département de physiologie médicale et de biophysique, Faculté de médecine, Université d’Indonésie, Central Jakarta 10430, IndonésieSuivre
Robby Nuraditya, Groupe de génie des cellules souches et des tissus, Université IMERI d’Indonésie, Université IMERI d’Indonésie, Central Jakarta 10430, IndonésieSuivre
Iqbal Facha, Unité de service intégrée de la technologie médicale des cellules souches (Cellules souches IPT TK), Dr. Hôpital général Cipto Mangunkusumo (RSCM), Central Jakarta 10430, IndonésieSuivre
Gita primaire, Département d’obstétrique et de gynécologie, Faculté de médecine, Université d’Indonésie, Central Jakarta 10430, IndonésieSuivre
Radiana Dhewayani Antarianto, Département d’histologie, Faculté de médecine, Université d’Indonésie, Central Jakarta 10430, IndonésieSuivre

ID ORCID

Samuel Febrian Wijaya : 0000-0002-6266-7236

Retno Lestari : 0000-0003-2006-0214

Inna Rahmawati : 0000-0001-6216-7496

Imelda Rosalyn Sianipar : 0000-0002-1438-096X

Robby Nuraditya : –

Iqbal Facha :-

Gita Pratama : 0000-0001-5626-1283

Radiana Dhewayani Antarianto : 0000-0002-8578-7505

Abstrait

Arrière-plan: Les cellules tueuses naturelles (NK) proviennent de la différenciation des cellules souches hématopoïétiques (CSH) dans la voie commune des progéniteurs lymphoïdes, et les CSH peuvent être obtenues à partir du sang du cordon ombilical (UCB). Des études comparatives de la différenciation des cellules NK entre les CSH cultivées et fraîchement isolées sont importantes dans le développement de la thérapie par cellules NK pour le cancer. Cette étude visait à comparer les étapes de maturation de la différenciation des cellules NK entre des échantillons de HSC cultivés et nouvellement isolés à l’aide d’interleukine-2 en l’absence de cellules nourricières.

Méthodes: Les cultures de différenciation ont été divisées en deux groupes selon la source HSC. Une coloration au Giemsa et une cytométrie en flux ont été réalisées pour déterminer les stades de maturation et la présence de récepteurs NKp46, respectivement.

Résultats: La coloration au Giemsa a révélé que les échantillons de HSC cultivés produisent un nombre plus élevé et des cellules NK plus matures (stade 5) que les échantillons de HSC fraîchement isolés. La cytométrie en flux a montré que l’intensité de fluorescence moyenne de NKp46 différait significativement entre les deux échantillons, et un niveau élevé de récepteur d’activation de NKp46 a été trouvé dans les échantillons isolés au jour 35.

Lire aussi  Chiffre d’affaires du marché de la greffe de cellules souches hématopoïétiques à

conclusion: Les échantillons de CSH en culture pourraient produire des populations de cellules NK plus matures que les CSH fraîchement isolées, ce qui sera bénéfique pour les applications thérapeutiques des cellules NK dérivées des CSH UCB.

Les références

  1. Yadav P, cuves R, Bano A, Bhardwaj R. Culture, expansion et différenciation des cellules souches hématopoïétiques : un aperçu des supports variables et disponibles. Cellules souches Int J. 2020;13:326–34.
  2. Khaddour K, Hana CK, Mewawalla P. Transplantation de cellules souches hématopoïétiques. 2022 juin 27. Dans : StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023 janvier–.
  3. Freud AG, Yu J, Caligiuri MA. Développement de cellules tueuses naturelles humaines dans les tissus lymphoïdes secondaires. Sémin Immunol. 2014;26:132–7.
  4. Björkström NK, Ljunggren HG, Michaëlsson J. Nouvelles connaissances sur les cellules tueuses naturelles dans les tissus périphériques humains. Nat Rev Immunol. 2016;16:310–20.
  5. Geiger TL, Sun JC. Développement et maturation des cellules tueuses naturelles. Curr Opin Immunol. 2016;39:82–9.
  6. Luevano M, Madrigal A, Saudemont A. Génération de cellules tueuses naturelles à partir de cellules souches hématopoïétiques in vitro pour l’immunothérapie. Cell Mol Immunol. 2012;9:310–20.
  7. Wu Y, Tian Z, Wei H. Contrôle développemental et fonctionnel des cellules tueuses naturelles par les cytokines. Immunol avant. 2017;8:930.
  8. Dezell SA, Ahn YO, Spanholtz J, Wang H, Weeres M, Jackson S, et al. Différenciation des cellules tueuses naturelles à partir des cellules souches hématopoïétiques : une analyse comparative des méthodes reposant sur l’héparine et les cellules stromales. Greffe de Moelle Sanguine Biol. 2012;18:536–45.
  9. Liu S, Galat V, Galat Y, Lee YKA, Wainwright D, Wu J. NK immunothérapie du cancer à base de cellules : De la biologie de base au développement clinique. J Hématol Oncol. 2021;14:7.
  10. Abel AM, Yang C, Thakar MS, Malarkannan S. Cellules tueuses naturelles : développement, maturation et utilisation clinique. Immunol avant. 2018;9:1869.
  11. Mizrahi O, Ish Shalom E, Baniyash M, Klieger Y. Cytométrie en flux quantitative : Préoccupations et recommandations en clinique et en recherche. Cytométrie B Clin Cytom. 2018;94:211–8.
  12. Eom S, Bise R, Kanade T. Détection de cellules souches hématopoïétiques dans des images de microscopie à l’aide d’une banque de filtres annulaires. Actes du 7e Symposium international IEEE sur l’imagerie biomédicale : du nano au macro. 14-17 avril 2010 ; Rotterdam, Pays-Bas.
  13. Shannon MJ, Mace EM. Intégrines de cellules tueuses naturelles et leurs fonctions dans la résidence tissulaire. Immunol avant. 2021;12:647358.
  14. Ullmo I, Koksal N, Ang HYK, Brady HJM. Développement in vitro de cellules nk murines et humaines à partir de cellules progénitrices hématopoïétiques. Méthodes Mol Biol. 2022 ;2463 : 31–45.
  15. Koehl U, Brehm C, Huenecke S, Zimmermann SY, Kloess S, Bremm M, et al. Purification et expansion de qualité clinique des produits de cellules NK pour un protocole de fabrication optimisé. Oncol avant. 2013;3:118.
  16. Luevano M, Domogala A, Blundell M, Jackson N, Pedroza-Pacheco I, Dernier S, et al. Les cellules souches hématopoïétiques de sang de cordon congelées se différencient en un plus grand nombre de cellules tueuses naturelles fonctionnelles in vitro que les cellules souches hématopoïétiques mobilisées ou les cellules souches hématopoïétiques de sang de cordon fraîchement isolées. PLoS One. 2014;9:e87086.
  17. Yu H, Fehniger TA, Fuchshuber P, Thiel KS, Vivier E, Carson WE, et al. Le ligand Flt3 favorise la génération d’un ancêtre distinct de cellules tueuses naturelles humaines CD34(+) qui répond à l’interleukine-15. Sang. 1998;92:3647–57.
  18. Domogala A, Blundell M, Thrasher A, Lowdell MW, Madrigal JA, Saudemont A. Les cellules tueuses naturelles différenciées in vitro des cellules CD34+ du sang de cordon sont plus avantageuses pour une utilisation comme immunothérapie que les cellules tueuses naturelles du sang périphérique et du sang de cordon. Cytothérapie. 2017;19:710–20.
  19. Del Zotto G, Antonini F, Pesce S, Moretta F, Moretta L, Marcenaro E. Phénotypage complet des cellules PB NK humaines par cytométrie en flux. Cytométrie A. 2020;97:891–9.
  20. Mu YX, Zhao YX, Li BY, Bao HJ, Jiang H, Qi XL, et al. Une méthode simple pour la préparation in vitro de cellules tueuses naturelles à partir de sang de cordon. BMC Biotechnologie. 2019;19:80.
  21. Hussein BA, Hallner A, Wennström L, Brune M, Martner A, Hellstrand K, et al. Impact des variants du gène du récepteur activant les cellules NK sur l’expression du récepteur et les résultats de l’immunothérapie dans la leucémie myéloïde aiguë. Immunol avant. 2021;12:796072. Erratum dans : Front Immunol. 2022;12:843461.
  22. Sinenko SA, Starkova TY, Kuzmin AA, Tomilin AN. Fonctions de signalisation physiologique des espèces réactives de l’oxygène dans les cellules souches : de la mouche à l’homme. Front Cell Dev Biol. 2021;9:714370.
  23. Jabbar S, Mathews P, Kang Y. Preuves émergentes de l’importance de la thiorédoxine-1 dans le vieillissement des cellules souches hématopoïétiques. Antioxydants (Bâle). 2022;11:1291.
  24. Degouve S, Tavares A, Viel S, Walzer T, Marçais A. L’inactivation de Dicer1 médiée par NKp46 entraîne une différenciation défectueuse des cellules NK et des fonctions effectrices chez la souris. Eur J Immunol. 2016;46:1902–11.
  25. Weidner CI, Walenda T, Lin Q, Wölfler MM, Denecke B, Costa IG, et al. Les cellules souches et progénitrices hématopoïétiques acquièrent une hyperméthylation distincte de l’ADN au cours de la culture in vitro. Représentant scientifique. 2013;3:3372.
  26. Goni R, García P, Foissac S. L’analyse statistique des données qPCR. Livre blanc sur l’intégromique. 2009 : 1–9.
  27. Browne DJ, Brady JL, Waardenberg AJ, Loiseau C, Doolan DL. Un protocole d’extraction d’ARN et de RT-qPCR analytiquement et diagnostiquement sensible pour les cellules mononucléaires du sang périphérique. Immunol avant. 2020;11:402.
  28. Granzin M, Wagner J, Köhl U, Cerwenka A, Huppert V, Ullrich E. Mise en forme de l’activité antitumorale des cellules tueuses naturelles par culture ex vivo. Immunol avant. 2017;8:458.
  29. Sarvaria A, Jawdat D, Madrigal JA, Saudemont A. Cellules tueuses naturelles du sang de cordon ombilical, leurs caractéristiques et leurs applications cliniques potentielles. Immunol avant. 2017;8:329.
Lire aussi  Pourquoi envisager une banque de sang de cordon au moment de la naissance ?





#Comparaison #des #étapes #maturation #des #cellules #tueuses #naturelles #par #Samuel #Febrian #Wijaya #Retno #Lestari
1688295494

Facebook
Twitter
LinkedIn
Pinterest

Leave a Comment

This site uses Akismet to reduce spam. Learn how your comment data is processed.

Un F16 s’est écrasé à Halkidiki, le pilote est sain et sauf

F-16 ©Eurokinissi ” )+(“arrêter\”> “).length); //déboguer contenttts2=document.querySelector(“.entry-content.single-post-content”).innerHTML.substring( 0, document.querySelector(“.entry-content.single-post-content “).innerHTML.indexOf( “” )); contenttts2=contenttts2.substring(contenttts2.indexOf( “fa-stop\”> ” )+(“arrêter\”> “).length);

ADVERTISEMENT